Перемежающийся озноб — один из симптомов малярии, инфекционного заболевания, вызываемого малярийным паразитом и характеризующегося перемежающимся ознобом, высокой температурой, потливостью, а также спленомегалией и анемией. Пресечение путей передачи инфекции заключается главным образом в уничтожении комаров Anopheles и предотвращении их укусов. Удаление мест размножения личинок Anopheles и использование инсектицидных препаратов. Для индивидуальной защиты можно применять репелленты или противомоскитные сетки, чтобы избежать укусов комаров. Контроль источника инфекции, своевременное информирование о вспышках, ликвидация больных малярией и носителей малярийного паразита. Периодические ознобы обследование: 1, кровь патогена экспертизы человека четыре вида малярии паразит только фальципарум малярии один в периферической крови только увидеть кольцо тело и гаметоцит, и в период приступа обнаружить возможность быть больше, большинство простейших в висцеральные капилляры в межприступный период, такие как в то время гаметоцит еще не появился, то анализ крови может быть временно отрицательным, поэтому, фальципарум малярии в приступ наиболее подходящим для анализа крови; остальные три вида малярии анализ крови не ограничен по времени При остальных трех видах малярии анализ крови не ограничен по времени, простейшие могут быть обнаружены как во время приступа, так и в межприступный период. Тем, у кого клинические проявления похожи на малярию, а анализ крови на простейшие отрицательный, следует настаивать на проверке крови дважды в день в течение нескольких дней. Тщательно проверяйте, как предписано, толстую пленку крови, ее сила во много раз выше, чем у тонкой пленки, и во всех случаях малярии паразит Plasmodium в конечном итоге будет обнаружен в периферической крови. Мазок, окраска и микроскопическое исследование крови из мочки уха или кончика пальца пациента по-прежнему являются наиболее надежным методом подтверждения диагноза малярии, причем диагноз может быть подтвержден обнаружением Plasmodium vivax в интраэритроцитарной стадии. Учитывая, что на точность микроскопического исследования влияют плотность простейших в крови, техника приготовления и окрашивания, деформация простейших или снижение их плотности после введения препарата, а также опыт микроскописта, в последние годы появился ряд усовершенствований традиционного анализа крови. Одним из них является метод QBC (количественное определение буферного покрытия) компании Becton Dickinson. В капиллярную пробирку с антикоагулянтом и акридиновым оранжевым отбирается 60 мкл крови пациента, добавляется поплавок, и после центрифугирования паразиты плазмодия концентрируются в верхнем слое эритроцитов и нижнем слое лейкоцитов. Благодаря наличию поплавка в центре пробирки два слоя клеток и паразиты плазмодия оттесняются к стенке пробирки, и флуоресцирующие паразиты плазмодия могут быть непосредственно рассмотрены под флуоресцентным микроскопом. Этот метод обладает эффектом концентрирования, что повышает чувствительность, не требует окрашивания и экономит время. Второй — вместо обычной воды для растворения крови используется 0,5-1,0% раствор сапонина, который после микроскопического исследования окрашивается раствором Гиля. Преимуществом является то, что толстая пленка крови, обработанная сапонином, прозрачна, в ней отсутствуют остатки эритроцитов и тромбоцитов, что помогает обнаружить малярийного паразита. 2.Иммунологический тест ①Plasmodium antigen позволяет выявить протозоозы, поэтому он может быть использован для клинической диагностики пациентов с симптомами заболевания, а также из населения для проверки источника инфекции и оценки эффективности лечения. Основные методы включают диффузионный тест на агарозе, конвексный иммуноэлектрофорез, иммуноферментный анализ, прямую флуоресценцию или ферментное иммуноокрашивание. Выявление антител к Plasmodium может быть использовано для эпидемиологических расследований, поиска источника инфекции; с помощью определения уровня антител у населения эндемичных районов для вывода о тенденции развития эпидемий малярии; скрининга доноров крови для предотвращения трансфузионного заражения малярией, а также для оценки эффективности противомалярийных мероприятий и т.д. Кроме того, при повторных эпизодах, вызванных неустановленными причинами, оно может быть использовано для профилактики малярийных инфекций. Кроме того, анализ на антитела к малярии может быть полезен для диагностики множественных эпизодов необъяснимой малярии. Для выявления антител обычно используются непрямой флуоресцентный тест на антитела, непрямой гемагглютинационный тест, иммуноферментный анализ и т.д. 3. Зондовый тест с использованием нуклеиновых кислот В настоящее время в стране и за рубежом для выявления малярийных паразитов используется несколько различных видов зондов с нуклеиновыми кислотами. Благодаря уникальной высокой специфичности, чувствительности, которая может быть выше, чем при микроскопическом исследовании, считается, что технология зондирования нуклеиновой кислотой является очень перспективной для замены традиционного микроскопического исследования, и может быть обработана партиями в течение короткого периода времени большого количества образцов, считается, что она может количественно оценить уровень Plasmodium в крови, эпидемиологических расследований малярии и оценки эффективности противомалярийных мер является очень потенциальным диагностическим инструментом. Остается решить ряд технических проблем, связанных с массовым производством зондов на основе нуклеиновых кислот и их широкомасштабным использованием в полевых условиях. В настоящее время признано, что ПЦР обладает самой высокой чувствительностью и специфичностью среди всех методов выявления малярии. С целью дальнейшего повышения чувствительности и специфичности ПЦР-технологии, а также для облегчения продвижения практической работы, на этой основе применяются и гнездовая ПЦР (nested PCR), ПЦР-ELISA и другие методы исследования. Помимо возможности прямого обнаружения Plasmodium в образцах антикоагулированной крови, созрела методика ПЦР для обнаружения Plasmodium на высушенных каплях крови на фильтровальной бумаге, что облегчает использование ПЦР для мониторинга малярии в отдаленных районах. Ее применение в полевых условиях ограничено высокими требованиями к лабораторным методам и условиям. В настоящее время в большинстве малярийных районов после сбора крови на месте необходимо возвращаться в лабораторию с лучшими условиями для проведения дальнейшего анализа. В настоящее время Всемирная организация здравоохранения рекомендует применять метод Dipstick, который основан на том, что Plasmodium falciparum способен синтезировать и выделять стабильный водорастворимый антиген — богатый гистидином белок II (HRP II), а приготовленное на его основе моноклональное антитело капают на иммунохроматографические полоски, затем адсорбируют, промывают и хроматографируют для выявления богатого белка II в крови. Присутствие в крови богатого гистидином белка II определялось после адсорбции, отмывки и окраски. По данным зарубежных исследований, сравнивающих дипстик и другие методы, чувствительность (84,2%~93,9%) и специфичность (81,1%~99,5%) дипстик метода для диагностики малярии выше; он отличается простотой работы, быстротой и стабильностью, легкостью освоения, подходит для микроскопического исследования, если трудно обеспечить качество лабораторной техники, определить эпидемиологический диапазон малярии, малярия находится в низкой степени передачи, необходимо избегать злоупотребления наркотиками, чтобы выявить наличие богатого гистона II в крови. Этот метод подходит для районов, где необходимо определить эпидемиологический размах распространения малярии, где малярия имеет низкую степень передачи и где необходимо избегать злоупотребления лекарственными препаратами для снижения развития резистентности. Важно отметить, что метод Dipstick имеет свои ограничения, так как с его помощью трудно обнаружить P. falciparum в инкубационном периоде или когда в крови присутствуют только зрелые гаметоциты.