Келоидные рубцы — это доброкачественные опухоли кожи, характерные только для человека. Обычно они возникают вторично после травмы кожи, при этом локализованные приподнятые келоидные рубцы вызывают зуд, боль и дискомфорт и постоянно разрастаются на окружающую нормальную кожу. В настоящее время, несмотря на то, что существуют различные методы лечения келоидов, результаты не являются удовлетворительными. После более чем 100 лет развития существуют различные хирургические процедуры, такие как иссечение и наложение швов, пересадка кожи, пересадка лоскута и т.д. Однако при использовании только хирургического вмешательства высок процент рецидивов патологических рубцов, особенно келоидных рубцов. Нехирургическое лечение является относительно менее инвазивным, более простым и легким. Основными вариантами лечения являются следующие: физиотерапия (компрессионная терапия, радиотерапия, лазерная терапия), традиционная китайская медицина (центелла азиатская, горький женьшень) и медикаментозное лечение (кортикостероиды, антиметаболиты, ретиноиды, силикон и т.д.). Одним словом, каждый из этих подходов имеет свои сильные и слабые стороны. Пинъянмицин — противоопухолевый препарат, который ингибирует пролиферацию эндотелиальных клеток сосудов и применяется клинически при лечении различных гемангиом, подавляет кровоснабжение рубцовой ткани и вызывает некроз и разжижение рубцовой ткани, а также подавляет активность коллагенсинтазы, что держит под контролем отложение коллагена. В целях дальнейшего поиска удобного, быстрого, безопасного и эффективного метода лечения келоидов мы использовали местное введение пингомицина для лечения келоидов и наблюдали за гистологическими изменениями келоидов, леченных местным введением пингомицина, используя гистологические и гистохимические методы, чтобы обеспечить теоретическую основу для клинического лечения келоидов. Группа клинического лечения A: Обычные анализы крови и рентгеноскопия грудной клетки проводились для определения того, может ли пациент переносить лечение. Приготовление раствора пингмицина: 8 мг пингмицина, растворенного в 5 мл 2% лидокаина гидрохлорида для инъекций и разведенного до получения бесцветной и прозрачной на вид жидкости, приготовленной до начала лечения, а остаток выброшен после лечения. Лечение: Продезинфицируйте область 1% йодом, используйте шприц объемом 5 мл, возьмите иглу №5 и сделайте укол вдоль основания поражения, так чтобы кончик доходил до середины рубца. После инъекции на место укола оказывается давление, чтобы лекарство не вытекло из отверстия иглы. Если рубец большой, можно вводить препарат одновременно в несколько мест. Если рубец возвышается над поверхностью кожи на 1,5 см, его следует сначала удалить хирургическим путем. Максимальная доза инъекции пингянмицина не должна превышать 0,2 мг/кг массы тела для одной инъекции один раз в 2 недели. Группа B: инъекция преднизолона ацетата 125 мг, растворенного в 2% лидокаина гидрохлорида инъекция 5 мл, основание поражения кожи закрытое лечение. Метод введения и курс лечения были такими же, как и в группе лечения. Гистологические срезы Все образцы келоидов были получены от пациентов, которые добровольно проходили инъекционное лечение келоидов в нашей больнице. 74 пациента в группе А с 88 келоидными рубцами; 52 пациента в группе В с 56 келоидными рубцами. У всех пациентов не было инфекций и язв, а также инфекционных, иммунологических, генетических и кожных заболеваний. Цель взятия проб была объяснена пациенту, и перед взятием проб было получено согласие. После успешной анестезии туловище и конечности были продезинфицированы 1% витальным йодом, келоид был иссечен, из которого келоид размером 10 мм х 10 мм был помещен в 10% формальдегид. Подготовка секции Обычное окрашивание HE: извлечение, фиксация, обезвоживание, прозрачность, встраивание, секционирование, окрашивание HE и герметизация гистохимическое окрашивание (пикриновая кислота 2 Сириус алое окрашивание): ① депарафинизация, парафиновые секции регулярно депарафинируются водой; ② окрашивание, раствор азуритового синего в течение 10 мин; промывка дистиллированной водой 3 раза; Сириус алое насыщенный пучок раствора пикриновой кислоты 15. -30мин; прямое выделение и дегидратация в безводном этаноле; ③дегидратация, прозрачность, герметизация, прозрачность в ксилоле, герметизация в нейтральной смоле. Результаты оценивались как окрашенные в зеленый цвет для коллагеновых волокон типа III и красный или желтый для коллагеновых волокон типа I. Для количественного анализа окрашивания пикриновой кислотой-аспарагиновой скарлатины использовалась система управления цветными графическими отчетами патологии высокой четкости HPIAS22000 (Tongji Qianping Imaging Company). Пять полных и не перекрывающихся мощных полей зрения (×400) были случайным образом выбраны для каждого среза, и площадь положительной реакции и общая площадь всех волокон в каждом поле зрения были измерены для расчета коэффициента положительной площади. Среднее значение отношения положительных площадей пяти полей зрения в каждом случае использовалось в качестве значения измерения для данного случая (отношение положительных площадей = общая площадь положительных реакций на единицу площади/общая площадь волокон на единицу площади x 100%). Количество фибробластов в рубцовой ткани группы В было значительно увеличено, клетки были распределены рядом с коллагеновыми волокнами, которые были плотно упакованы и дезорганизованы. Гистохимическое окрашивание группы А показало, что в рубцовой ткани преобладали рассеянные зеленые и тонкие коллагеновые волокна III типа, с меньшим количеством красных и желтых толстых коллагеновых волокон I типа. Напротив, в группе В в гиперпластических тканях рубца наблюдалось плотное распределение красных или желтых толстых коллагеновых волокон I типа, которые располагались пучками, с неравномерным распределением плотности; коллагеновые волокна III типа были меньше по количеству и были разбросаны вокруг коллагена I типа в виде редкой сети. По результатам одностороннего ANOVA между группами наблюдалась значительная разница (p<0,01. По результатам q-теста наблюдалась значительная разница в показателе положительной площади коллагеновых волокон III типа между группой A и группой B.